构建大鼠缺血性脑卒中后肌肉萎缩模型，通常需要先建立缺血性脑卒中模型，再观察并评估脑卒中后肌肉萎缩的情况。以下是详细的构建方法：

一、缺血性脑卒中模型的构建

1. 实验动物选择与饲养

   • 选用健康雄性SD大鼠，体重一般控制在250~300克，以确保实验的一致性和可重复性。
   • 在实验前进行一周的适应性饲养，确保大鼠对环境熟悉，减少应激反应。

2. 手术操作

   • 麻醉：通过腹腔注射水合氯醛（如10%水合氯醛，300~350 mg/kg）对大鼠进行麻醉。
   • 暴露血管：大鼠麻醉后，仰卧位固定于手术台上，颈部正中做切口，钝性分离并暴露颈总动脉（CCA）、颈外动脉（ECA）和颈内动脉（ICA）。
   • 插入线栓：结扎ECA，从ECA残端插入线栓（如头端过蜡处理的尼龙线），经ICA进线约18~22mm，直至感到轻微阻力，此时线栓已到达大脑中动脉（MCA）起始处，形成MCA栓塞模型。
   • 缺血与再灌注：确认线栓位置无误后，结扎ECA近心端，缝合皮肤。此时大鼠进入缺血状态，持续60~120分钟。缺血结束后，迅速拉出线栓，恢复血流灌注。

3. 术后护理

   • 术后大鼠单笼饲养，保持环境温度适宜，避免剧烈震动和噪音干扰。
   • 使用白炽灯照射维持肛温在36~37℃，直至大鼠苏醒并恢复活动。
   • 提供充足的饮水和泡发后的鼠粮，以促进恢复。

二、肌肉萎缩的评估

1. 观察与记录

   • 在脑卒中模型构建成功后，定期观察并记录大鼠的体重、肌肉力量、活动度等指标。
   • 特别注意观察后肢肌肉的变化，因为脑卒中后肌肉萎缩通常在后肢表现得更为明显。

2. 肌肉组织病理学检查

   • 在实验结束后，处死大鼠并取后肢肌肉组织进行病理学检查。
   • 通过HE染色等方法，观察肌纤维的形态、排列和大小，评估肌肉萎缩的程度。

3. 肌肉质量评估

   • 可以通过称量肌肉组织的重量，与正常大鼠的肌肉重量进行比较，以量化肌肉萎缩的程度。

三、模型验证与评估

1. 神经功能评分

   • 使用改良神经功能缺损评分（mNSS）或其他评分标准，对大鼠的神经功能进行评估。
   • 神经功能评分可以反映脑卒中的严重程度，间接评估肌肉萎缩与脑卒中之间的关系。

2. 行为学检测

   • 进行前肢抓握力量测试、平衡木行走测试等行为学检测，评估大鼠的肌肉力量和协调性。
   • 这些行为学检测可以直观地反映肌肉萎缩对大鼠运动功能的影响。

四、注意事项

1. 实验条件控制

   • 确保手术操作的无菌性，避免术后感染。
   • 保持实验环境的稳定，减少外界因素对实验结果的影响。

2. 个体差异处理

   • 大鼠之间存在个体差异，因此在实验过程中应密切关注每只大鼠的状态，及时调整实验方案。

3. 伦理审查

   • 在进行动物实验前，应提交实验方案进行伦理审查，确保实验过程符合动物伦理规范。

通过以上步骤，可以成功构建大鼠缺血性脑卒中后肌肉萎缩模型，为进一步研究脑卒中后肌肉萎缩的发病机制、病理变化及药物治疗提供实验依据。