一、实验动物选择
‌种系选择‌：‌小鼠‌：优先选用BALB/c或C57BL/6品系，雄性，5-6周龄，体重20-25g‌。
‌大鼠‌：常用雄性SD大鼠，6-8周龄，体重120-180g‌。
‌豚鼠‌：健康雄性豚鼠，体重300-500g，适用于模拟儿童哮喘特征‌。

二、模型构建流程

1. ‌致敏阶段‌
‌致敏剂配制‌：OVA与氢氧化铝佐剂混合（如小鼠：0.1-0.2mg OVA + 2.25mg氢氧化铝/只；大鼠：10mg OVA + 200mg氢氧化铝/只），以生理盐水或PBS溶解‌。

‌致敏方法‌：‌腹腔注射‌：‌小鼠‌：第0、7天注射0.2ml致敏液，或隔日注射7次（共14天）‌。
‌大鼠‌：第1、8天注射1ml致敏液，部分研究加强致敏至4次‌。

2. ‌激发阶段‌
‌激发剂配制‌：1-5% OVA溶液（生理盐水或PBS溶解），雾化液浓度为1%时适用于大鼠，5%适用于小鼠‌。

‌激发方法‌：‌雾化吸入‌：动物置于密闭雾化箱，雾粒直径3-5μm，每日1次，每次30分钟，小鼠连续7天，大鼠持续14天‌。

‌滴鼻激发‌（仅小鼠）：第21天起麻醉后滴入50μL 1-2% OVA溶液，连续7天‌。

三、模型评价指标
‌症状观察‌：激发后10分钟内记录喷嚏、喘息、搔鼻次数‌。

‌病理学检测‌：‌HE染色‌：肺组织显示肺泡结构破坏、支气管周围炎性细胞浸润、杯状细胞增生及气道重塑‌。
‌AB-PAS染色‌：检测气道黏液分泌增多‌。

‌炎症因子与免疫指标‌：‌血清检测‌：总IgE及IL-4、IL-5、IL-13等Th2型炎症因子显著升高‌。
‌肺泡灌洗液（BALF）‌：嗜酸性粒细胞比例增加，IL-4、IL-5水平上升‌。

四、注意事项
‌剂量与周期优化‌：小鼠OVA腹腔注射剂量需≤0.2mg/次，避免过度激发导致急性过敏反应‌。

‌操作规范‌：雾化时需控制雾粒大小（3-5μm），确保沉积于气道而非肺部深处‌。
滴鼻操作需完全麻醉动物，避免激发液误入消化道‌。

‌模型验证‌：需同步设置PBS对照组，验证病理改变、炎症因子升高及症状评分差异‌。

‌说明‌：该模型通过Th2型免疫反应模拟气道炎症与高反应性，适用于哮喘机制研究与药物疗效评估‌13。不同动物种系的激发方案需结合研究目标调整‌。